胰/酶使用注意：

　　1、在使用胰/酶細胞消化液的過程中要特別注意避免消化液被細菌污染。

　　2、胰/酶細胞消化液消化細胞時間不宜過長，否則細胞鋪板后生長狀況會較差。

　　貼壁細胞的消化：

　　1、吸去培養(yǎng)液，用無菌的PBS、Hanks液或無血清培養(yǎng)液洗滌細胞一次，以去除殘余的血清

　　2、加入少量胰/酶細胞消化液，略蓋過細胞即可，根據(jù)胰/酶效率差異可以增加惑減少胰/酶用量。室溫放置30秒至2分鐘（不同的細胞消化時間有所不同）

　　3、顯微鏡下觀察，細胞明顯收縮，并且肉眼觀察培養(yǎng)器皿底部發(fā)現(xiàn)細胞的形態(tài)發(fā)生明顯的變化呈白茫狀；或者用槍吹打細胞發(fā)現(xiàn)細胞剛好可以被吹打下來。

　　4、此時吸除胰/酶細胞消化液。加入含血清的*細胞培養(yǎng)液，吹打下細胞，即可直接用于后續(xù)實驗如果發(fā)現(xiàn)消化不足，則加入胰/酶細胞消化液重新消化。

　　如果發(fā)現(xiàn)細胞消化時間過長，未及吹打細胞，細胞已經(jīng)有部分直接從培養(yǎng)器皿底部脫落，直接用胰/酶細胞培養(yǎng)液把細胞全部吹打下來。1000-2000g離心1分鐘，沉淀細胞，盡量去除胰/酶細胞消化液后，加入含血清的*培養(yǎng)液重新懸浮細胞，即可用于后續(xù)實驗。

　　常用的細胞消化液為胰蛋/白酶（Trypsin），EDTA等，其功能主要是使細胞間的蛋白質(zhì)（如細胞外基質(zhì)）水解，改變細胞間的連接，使組織或細胞片分散成單個細胞，制成細胞懸液用于進一步的實驗。

　　影響消化速度的因素較多，主要有胰/酶溶液的活性（配制條件、凍存或4℃保存時間長短、是否反復(fù)凍融、化凍后存放時間及溫度等）、消化時的溫度（氣溫、細胞培養(yǎng)瓶及胰/酶溶液的溫度）以及所加胰/酶溶液的多少等 。

　　加入胰蛋/白酶-EDTA溶液，視細胞瓶的大小加入體積為2ml或更多（依培養(yǎng)器皿的大小而定），以使充分浸潤；

　　一般消化時間約為1至3分鐘，肉眼觀察瓶底由半透明（細胞單層連接成片）轉(zhuǎn)為透明、點狀（出現(xiàn)細小空隙）時，棄去細胞消化液，或看見培養(yǎng)瓶壁呈白茫狀即可。并加入適量的*培養(yǎng)液終止消化，吹打分散；如見大量細胞片狀脫落，已消化過頭，則不能頃倒消化液而直接進行下一步操作。（消化過頭，可造成大量細胞從瓶壁上脫下，甚至造成細胞破碎。由于血清含有非特異性胰蛋/白酶抑制劑，所以加入*培養(yǎng)基可以終止反應(yīng)。

　　胰/酶配置方法：

　　1、培養(yǎng)液配制，方便好用，對細胞影響小，并且培養(yǎng)液的ph值正好適合胰蛋/白酶的溶解

　　2、生理鹽水配制，要先調(diào)ph值7.2到7.4（①胰/酶（1：250） 2.5 克②EDTA-Na 0.3克③NaCl 8.0克④KCl 0.4克⑤Glucose 1.0克⑥Phenol Red 0.005克⑦Water 1000 mL磁力攪拌2-3小時，調(diào)pH 7.8-8.0，過濾除菌。）

　　3、pbs（0.1%胰/酶溶液的配制：稱取胰/酶粉末0.1g，先用少許滅菌過的PBS調(diào)成糊狀，然后補足到100ml。置室溫攪拌4小時或冰箱內(nèi)過夜，過濾滅菌，分裝，4℃保存?zhèn)溆?。? 或是hanks或是D-hanks液配制（1.稱取胰蛋/白酶粉末置燒杯中，先用少許D-Hanks 平衡/鹽溶液（pH7.2 左右）調(diào)成糊狀，然后再補足D-Hanks 平衡/鹽溶液，攪拌混勻，置室溫4 小時或冰箱過夜，并不斷攪拌振蕩；2.次日，先用濾紙粗濾，再進行過濾除菌，分裝入瓶中，低溫冰箱保存?zhèn)溆?，常用濃度?.25% 或0.125%。胰蛋/白酶溶液偏酸，使用前可調(diào)用碳酸/氫鈉溶液調(diào)pH 至7.2 左右。）

　　一般0.45微米的一次性濾器過濾除菌，至于作用效果，需要消化一次細胞感覺一下，因為不同廠家的酶不一樣，有的作用溫和，有的作用劇烈。

　　4、是否需要四度放置過夜，取決于你的胰/酶的純度。過去的胰/酶純度不高，所以難以溶解，需要四度過夜. 而現(xiàn)在的胰/酶純度都很高，就沒有必要四度過夜。從理論上來說，四度放置過夜，給細菌生長的機會，盡管過濾可以出去細菌，可是出不掉其代謝產(chǎn)物。

　　胰蛋/白酶不溶,有絮狀物的原因，考慮有：

　　1、過期或是酶已經(jīng)部分變性

　　2、溶液ph值不對

　　3、在沒過濾之前的絮狀沉淀是正常現(xiàn)象，因胰/酶多取自動物胰腺，沉淀為組織塊，過濾后即可